本文來源于：生物制品圈 本文原創為：干細胞者說

類器官技術始于2009年，荷蘭Hubrecht研究所的 Hans Clevers 團隊成功的將成體干細胞培養成為小腸的隱窩和絨毛結構。

類器官 VS 組織樣本 VS 動物模型

目 錄
一、類器官的概念
二、類器官的發展歷史
三、類器官的培養
四、類器官的應用
五、類器官的產業鏈
六、類器官的市場格局
七、類器官的挑戰
八、類器官的未來發展

-01-類器官的概念

類器官（Organoids）指利用成體干細胞或多能干細胞進行體外三維（3D）培養而形成的具有一定空間結構的組織類似物。盡管類器官并不是真正意義上的人體器官，但能在結構和功能上模擬真實器官，能夠最大程度地模擬體內組織結構及功能并能夠長期穩定傳代培養。

目前類器官分為兩類：組織來源類器官和多能干細胞來源類器官。

相比傳統的二維培養模型，類器官代表著一種能夠概括整個生物體生理過程的創新技術，具有更接近生理細胞組成和行為、更穩定的基因組、更適合于生物轉染和高通量篩選等優勢。而與動物模型相比，類器官模型的操作更簡單，還能用于研究疾病發生和發展等機理，因而在器官發育、精準醫療、再生醫學、藥物篩選、基因編輯、疾病建模等領域都有廣泛的應用前景。2013年，類器官被《科學》雜志評為年度十大技術。2018年初，類器官被評《自然·方法》評為2017年度方法。

在Pubmed上搜索 “類器官” 這一詞條，類器官相關文章從2010年的42篇，在短短十年間，躍升到2020年的2097篇。類器官以極迅猛的態勢成為研究熱點。

-02-類器官的發展歷史

類器官的起源可以追溯到1907年，當時44歲的美國貝克羅萊那大學教授威爾遜 (H. V. Wilson)發現通過機械分離的海綿 (sponge) 細胞可以重新聚集并自組織成為新的具有正常功能的海綿有機體，他的研究結果于1910年發表。威爾遜的研究證明了成年的有機體在無需外界幫助、無需從特定的解剖學階段開始，也具有完整的信息并可以成功發育成新的有機體。

對類器官技術而言，另外一個十分關鍵的契機是干細胞技術的發展。干細胞想必大家并不陌生，很多人對于干細胞的第一印象都是來源于媒體中對于血液疾病造血干細胞移植療法的介紹。近年來火熱的干細胞研究，主要開始于上世紀末。1987年，A. J. Friedenstein發現間充質干細胞 (Mesenchymal Stem Cell, MSCs)。 1998年，美國生物學家James Thomson首次分離得到人胚胎干細胞。2007年，山中伸彌教授成功制造出人誘導多能干細胞(induced Pluripotent Stem Cells, iPSC)。如今，絕大多數類型的非腫瘤來源的人源類器官均可由MSCs或iPSC發育而來，干細胞研究的飛速進展為類器官研究帶來新的活力。

類器官發展主要事件

數據來源：Am J Physiol Cell Physiol雜志

當代類器官的發展成果，主要集中在近十余年。

• 2007年，Hans Clevers 的實驗室通過 lineage tracing 驗發現小腸和結腸的干細胞為 Lgr5+細胞。
• 2009年，Hans Clevers實驗室使用單個鼠LGR5+腸干細胞在體外自組織成為具有腸隱窩-絨毛結構的腸類器官。
• 2011年，由人多能干細胞和原代成體干細胞發育而來的腸類器官被成功制作。同年，由鼠胚胎干細胞培育而來的視網膜類器官被首次成功培育。
• 2012年，由人多能干細胞發育而來的視網膜類器官成功培育。
• 2013年，由人多能干細胞發育而來的腦類器官被成功培育。肝、腎、胰類器官被成功培育。
• 2014年，前列腺、肺類器官被成功培育。
• 2015年，乳腺、輸卵管、海馬體類器官被成功培育。
• 2020年，蛇毒液腺類器官被成功培育。

類器官的研究熱點是病人來源的類器官 (Patient-Derived Organoids, PDOs)，因為通常用于腫瘤患者的疾病建模、研究與藥物篩選，常常被稱為腫瘤類器官。腫瘤類器官的發展開始于2013年，自此之后呈逐年上升趨勢。腫瘤類器官是指將患者活檢、穿刺或手術切除組織在基質膠中培養數周得到的類器官。腫瘤類器官在高度保持源腫瘤的異質性和患者之間的異質性的同時，類器官個體間形態、尺度保持基本均一，為腫瘤發病機理研究、藥物篩選、個性化精準醫療、再生醫學等領域提供了快速、優良的技術平臺。

目前3D類器官培養技術已經成功培養出大量具有部分關鍵生理結構和功能的類組織器官，比如：腎、肝、肺、腸、腦、前列腺、胰腺和視網膜等。

-03-類器官的培養

類器官的培養可以利用體細胞、成體干細胞（包括祖細胞）或多能干細胞。2009年，腸道器官模擬技術率先取得突破，研究人員發現，成人腸道干細胞可以在體外增殖和自發組織化。其特征是能夠表達LGR5，這是一種編碼Wnt激動劑R-spondin受體的基因，同時需要特定的分子圍繞在旁（如Wnt、KGF和noggin）。以此為理論基礎，研究人員開發了一種三維培養體系，能夠在體外重建腸道干細胞的適宜環境，并從腸道上皮細胞或單個LGR5+干細胞分化出具有自我更新能力、保持腸道腺窩絨毛狀結構的類器官。該模型可以持續擴增達3個月，穩定的基因組保證了純化和生產放大等優勢，此后這種方法被用于從其它主要器官上皮組織培養各種類器官。

成人干細胞衍生的類器官培養，通常是通過將分離的成人干細胞或所需器官培養的單細胞懸浮液，嵌入到細胞外基質（ECM）水凝膠中來建立的。例如腸道器官，從小腸或結腸分離出的隱窩細胞足以培養出類器官，也可以從分離的成人腸干細胞中培養出類器官。

上皮類器官培養基是以附加與器官相關的生長因子的培養基為基礎的。因此，從其他組織（如呼吸道、肝臟、胰腺、皮膚、膀胱、大腦、心臟）提取的細胞器要求在培養中補充相關生長因子。例如大腦類器官培養過程如下圖：誘導多能干細胞（iPSC）衍生細胞在神經誘導介質中生長，產生神經外胚層，嵌入Matrigel中，并在旋轉生物反應器或軌道搖床中生長，以更好地擴散，獲得三維腦器官。在暴露于維甲酸的情況下，大腦器官通過自我組裝模式，形成自締和組織，形成包括放射狀膠質細胞在內的不同種群的神經祖細胞，這些神經祖細胞擴展形成大腦結構。

除了成體干細胞，多能干細胞（包括誘導干細胞和胚胎干細胞）也可以利用其自我更新及分化能力來制備類器官。由于從多能干細胞中提取的類器官是通過同質群體定向分化而形成的，因此，必須在一個喚醒胚胎發生的動態過程中重新創造組織特異性細胞類型及其微環境。因此，多能干細胞類器官培養必須在分化過程中提供合適的生態位信號。由于這一過程較復雜，多能干細胞類器官往往含有不同于模型器官的細胞類型，使靶組織的信號環境和自組織復雜化。

1、科學研究中的類器官培養

1.1 上皮類器官研究上皮細胞-免疫細胞相互作用

上皮細胞出現在機體所有和外界接觸的邊界，比如皮膚，呼吸道，肺，消化道，是機體對抗病原體侵染的第一層屏障，也是第一個對病原性感染作出反應的細胞。為了維持體內平衡，并提供對感染的快速反應，上皮細胞與免疫細胞密切配合。所以在上皮區域，也是全身免疫細胞濃度最高的區域。建立上皮細胞和免疫細胞相互作用的模型，是研究抗感染免疫和損傷后免疫的重要手段。上皮細胞類器官的建立，可以非常精準的模擬機體上皮環境，也被發展起來研究上皮和免疫細胞相互作用。

有三種共培養的模式

1.用存在于細胞外基質中的重組細胞因子處理類器官，評價免疫細胞衍生細胞因子對于上皮細胞的影響。如IL-4和IL-13促進叢生細胞分化，而IL-22支持干細胞增殖和存活。

2.將器官消化到單個細胞，然后在免疫細胞存在的情況下，再生長。用于評估免疫細胞和免疫細胞衍生的細胞因子（可溶性或膜結合）對器官生長和分化的影響，以及上皮細胞對免疫細胞表型的影響。

3.在ECM或生長培養基（懸浮培養）中，向完整的類器官中添加（活化的）免疫細胞，如T細胞或固有淋巴樣細胞（ILCs），以評估免疫細胞與上皮細胞之間的相互作用。這些檢測的讀數通常包含消化形成的器官和隨后的轉錄。單細胞RNA測序或定量PCR（QPCR），成像和/或流式細胞術評估上皮細胞和/或免疫細胞表型。在這些共培養中使用的免疫細胞要么直接從小鼠組織（例如，脾細胞、腸上皮內淋巴細胞、固有層T細胞、固有層ILCs或肺ILC2s）中分類，要么直接從人外周血中提取，要么先在體外分化。

1.2 胸腺類器官研究T細胞發育

胸腺是T細胞成熟和從祖細胞向成熟的幼稚淋巴細胞分化的中心部位。來源于骨髓的T細胞祖細胞在胸腺皮質進行陽性選擇，隨后在胸腺髓質中進行陰性選擇。胸腺的這些區域由兩種不同的上皮細胞組成：皮質胸腺上皮細胞（CTECs）和髓質胸腺上皮細胞（MTECs）。3D重建胸腺被證明是模擬其功能的關鍵，幾種胸腺類器官的產生方法：這些器官培養通常是從人類身上建立起來的或胎鼠或新生兒胸腺組織，但也有報道稱TEC樣細胞與人胚胎干細胞的體外分化，這些培養都產生胸腺樣結構。在體外產生活的T細胞，并在移植到裸鼠上時發揮作用。有趣的是，雖然長時間的類似胸腺的培養是可能的（離體培養長達56天），但細胞在連續傳代時失去了集落形成能力。重要的是，雖然在成年小鼠中已經發現了一種雙能的TEC前體，但含cTECs和mTECs的胸腺器官尚未從單個干細胞中生成。此外，考慮到小鼠體內某些雙能TEC前體的生長因子已被發現（例如BMP 4和IL-22），可以嘗試這些因子是否可用于維持TEC的祖細胞來源的類器官。

2、腫瘤微環境

兩種主要的方式被使用（以非小細胞肺癌為例）

在整體方法（左）中，腫瘤活檢組織是在氣液界面間環境培養，所有腫瘤細胞類型的細胞懸液，包括內源性免疫細胞和其他非上皮細胞類型，促進腫瘤特異性T細胞的生長。

在還原模擬方法（右）中，上皮類器官是從腫瘤活檢組織中生長出來的，然后與來自同一患者外周血的自體免疫細胞共培養，以促進腫瘤反應細胞的連續擴張。

雖然整體方法允許包括整個腫瘤微環境的腫瘤材料的培養，因此與體內情況非常相似，但不易長時間維持，而還原模擬方法允許腫瘤上皮的長期培養和擴展，這使得更廣泛，更長期的研究成為可能。

3、藥物篩選

3.1 促進心肌纖維細胞生長化合物篩選

動物模型，主要是老鼠，被廣泛用于研究心臟病，提供有價值的結果。然而，由于許多功能和生物學特性的物種差異很大，它們對人類心臟疾病和藥物安全性的推斷很差。人類多能干細胞（hPSC）可以為生物醫學和藥物研究提供無限的人類心肌細胞來源，有可能彌合這一鴻溝。然而，傳統2D培養中的hPSC源性心肌細胞缺乏功能成熟，，這在某些情況下阻礙了它們準確預測人類生物學和病理生理學的能力。多細胞3D人體類器官提供了更精確的模型，是解決這一問題的潛在方法。澳大利亞昆士蘭大學生物醫學系的科學家在Cell Stem Cell發表文章，闡述他們基于96孔板，培養心臟心肌類器官，進而進行化合物篩選的新流程。

具體流程如下圖：

基于類器官，將5000種化合物，篩選出不同功能化合物。

3.2 特定神經類器官培養及藥物篩選等應用

首先神經球在不同分化培養基種培養（具體的誘導因子及生長因子見下圖），產生大腦，中腦，海馬，前腦等不同腦部類器官。

（資料來源：干細胞者說）

-04-類器官的應用

類器官作為一個新興的技術，在科學研究領域潛力巨大，包括發育生物學、疾病病理學、細胞生物學、再生機制、精準醫療以及藥物毒性和藥效試驗。類器官培養使研究人體發育提供了不受倫理限制的平臺，為藥物篩選提供了新的平臺，也是對現有2D培養方法和動物模型系統的高信息量的互補 。此外，類器官為獲取更接近自然人體發育細胞用于細胞治療成為可能。

通過類器官繁殖的干細胞群取代受損或者患病的組織，類器官提供自體和同種異體細胞療法的可行性，未來這一技術在再生醫學領域也擁有巨大的潛力。使用這項技術，采用CRISPR/Cas9能夠糾正體外遺傳異常并能夠將健康的轉基因細胞再次回輸入患者體內，并在后期整合入組織內。在精準醫學應用中，患者衍生的類器官也被證明為有價值的診斷工具。在進行治療之前，采用從患者樣本來源的類器官篩查患者體外藥物反應，旨在為癌癥和囊胞性纖維癥患者的護理提供指導并預測治療結果。隨著類器官培養系統以及其實驗開發技術的不斷發展，類器官應用到了各大研究領域。

1、通過類器官對發育和疾病進行建模

研究人員可以通過類器官來模擬人類發育和疾病，因為類器官是從人類干細胞或成年細胞產生的誘導性多能干細胞生長而來的，它們的成分和結構也與原發組織相似，并且易于操作和冷凍保存。這意味著類器官可以用于研究源自干細胞的人體組織且難以通過動物模型模擬的人類疾病分析，研究人員僅需少量的起始物質即可培養類器官。

因其與對應的器官擁有類似的空間組織、保持一些關鍵特性并能夠重現部分生理功能，而被認為是檢測人類生物學和疾病方面的新模型。相較于細胞系、基因工程鼠和人源化異種移植鼠（patient-derived xenografts, PDX）這些傳統的研究模型，類器官模型（鼠源類器官mouse-derived organoids, MDO和人源類器官patient-derived organoids, PDO）不但能夠取自正常組織和組織癌變過程中各個階段的腫瘤組織，而且其培養體系簡單易操作，時間和金錢成本較低，且具有較高效率，因而得到廣大研究人員的親賴，被Nature Methods評為2017年生命科學領域年度技術。

主要研究模型對比

數據來源：Science雜志

目前，類器官多用于腫瘤癌癥的研究中。觀察下圖中臨床前腫瘤癌癥模型的比較，可以發現類器官有著很強的優勢：

目前，癌癥聯盟組織如國際癌癥基因組聯盟（International Cancer Genome Consortium，ICGC）、癌癥基因組圖譜計劃（The Cancer Genome Atlas， TCGA）所使用的大部分樣本都取自于原發腫瘤（primary tumors）。相比之下，PDO可以取自腫瘤發展過程中的任何階段，而且只需要一小部分腫瘤組織即可在體外進行培養和擴增。研究人員已經在肝癌、胰腺癌和結腸癌肝轉移組織中，通過穿刺獲得活檢，成功的在體外進行類器官培養。甚至能夠將前列腺癌患者的循環腫瘤細胞在體外培養成類器官。也有研究人員從尿路（urine）和支氣管肺泡（bronchial lavage）的正常細胞中成功培養類器官，但是目前還不清楚這些培養方法能否適用于這些組織來源的腫瘤類器官培養。

2、干細胞類器官工程

干細胞生物工程技術的進步提高了控制細胞類型，組織和相互作用的能力，而類器官工程正需要通過直接修飾干細胞或控制微環境來操縱每個結構層�，F在，科學家已經開發了更精確的合成環境，通過用信號蛋白修飾基質的生物惰性區域，可以更好地控制干細胞的活性。類器官工程技術對于一些體內環境成分復雜、需要精確建模的發育研究特別有用。

3、類器官與精準醫療

類器官技術正在成為個體化治療的工具，運用類器官技術進行個體化治療是指，通過體外對類器官進行藥物篩選和基因型分析，制定適合這個個體的治療藥物和方法。截至到目前，不同腫瘤PDOs對傳統和正在研發的藥物所產生的反應是各種各樣的。對目前有限的資源研究發現，大部分PDOs所展現的治療反應和相對應的病人剛開始對治療的反應是一致的。PDOs也可以用于針對被動或獲得性耐受開發新的藥物。更重要的是，PDOs對具有細胞毒性的藥物敏感性較強，因而可以更好的預測病人使用后的臨床反應。接下來，研究人員對大量個體PDOs的藥物反應數據進行整合分析，找出共同特征，進而對一類相似病人進行生物標記物開發研究。

3.1藥物篩選

類器官培養物可用于藥物篩選，這可將腫瘤的遺傳背景與藥物反應相關聯。來自同一患者健康組織的類器官的建立提供了通過篩選選擇性殺死腫瘤細胞而又不損害健康細胞的化合物來開發毒性較小的藥物的機會。自我更新的肝細胞類器官培養物可用于測試潛在新藥的肝毒性（臨床試驗中藥物失敗的原因之一）。

藥物篩選模型對比

3.1.1 類器官藥物篩選的優勢

速度快：類器官構建成功率高以及培養速度快。常規來說，在類器官培養一周之后就可以進行藥篩。從樣本采集到出具藥敏結果的全流程已經可以很好地控制在2周之內。

通量高：從可篩查的藥物通量來說，利用類器官不僅可以在孔板上進行多種藥物的篩查，每個藥物還可以測試不同的濃度，多個實驗平行開展。

臨床相關性強：類器官用于癌癥藥篩的臨床相關性和預測有效性在多篇研究中都已經得到了較為充分的證實。Vlachogiannis G團隊在Science發表了腫瘤類器官體外藥敏測試指導臨床用藥的里程碑式研究，在71位轉移性胃腸道癌提取了110份組織構建了類器官，共測試了55種抗癌藥物。研究結果顯示，類器官藥篩達到了93%的特異性，100%的靈敏度、88%的陽性預測率和100%的陰性預測率，展現了極高的臨床相關性。

3.1.2 類器官進行藥篩的流程

藥物篩選流程包括類器官的構建、評估、藥敏檢測三大方面：

類器官構建：類器官的樣本來源通常為腫瘤組織或者胸腹水等惡性積液，主流的培養方法包括較為常用的正置膠滴法、適用于腫瘤和睪丸類器官培養的倒置膠滴法、適用于有氣體接觸的黏膜類器官（腸、呼吸道）培養的氣液界面法以及需要較大擴增（腦類器官）的生物反應器法等。首先將患者來源的腫瘤樣本組織通過機械剪切得到腫瘤細胞團，再將細胞團酶消化成單細胞。分離消化后，將細胞嵌入到基質膠中并在96/384孔板上進行膠滴的種接，再覆蓋以培養基和細胞因子培養。類器官培養至直徑幾百微米的細胞小球即可用于藥篩。類器官培養特有的重要試劑包括消化液、培養基（例如Wnt、R-Spondin、Noggin等細胞因子）、基質膠（Matrigel等）。

類器官評估：在培養好類器官之后，對于類器官的評估和驗證也至關重要。通過基因測序、免疫熒光、HE染色等方法，從形態學、組織病理學以及分子遺傳學等多個維度對類器官進行鑒定。評估的目的是確定類器官和原腫瘤具有一致性，這也是進行后續藥篩的前提。

藥物檢測：類器官目前可篩選的藥物種類包括化療藥、小分子靶向藥、抗體藥物等。藥篩的核心檢測檢測指標通常為IC50以及細胞抑制率，根據這些指標在篩查的藥物中選取對腫瘤抑制效果最佳的藥物。在中國的注冊臨床中，類器官以化療藥的敏感性檢測作為主流應用，類器官用于檢測靶向藥和免疫治療的敏感性在未來還有極大的發揮空間和應用潛力。

3.1.3 類器官藥篩的發展方向

類器官藥篩與二代測序作為組合產品使用，二者在臨床上可以有機結合，很好地相輔相成。二代測序從基因層面上檢測出患者的靶點突變情況和潛在的藥物敏感靶點，為醫生和患者提供初步用藥選擇，但是單憑二代測序結果無法保證完全的臨床療效。部分研究報道和臨床案例指出，二代測序篩出的潛在靶向藥并沒有在實際臨床上反應出有效性，這一部分的不確定性通過類器官可以很好排查。

3.2 基因型分析

來自不同健康器官的類器官的生長，然后對培養物進行全基因組測序，可以分析器官特異性突變譜。通過生長來自同一腫瘤不同區域的類器官，可以用于研究腫瘤內異質性。區域特異性突變譜可以通過類器官的全基因組測序來揭示。使用與上述相似的方法，可以利用類器官來研究特定化合物對健康細胞和腫瘤細胞突變譜的影響。

癌癥是由致病基因突變的逐漸積累引起的。因此，了解在組織穩態和腫瘤發生過程中活躍的突變過程是很重要的。（資料來源：中君亞泰、干細胞者說）

-05-類器官產業鏈

類器官行業的上游公司主要集中在為3D細胞培養提供試劑和材料原料，包括提供細胞支架材料、胞外基質、細胞生長因子、培養基和生物反應器等。其中有比較老牌的試劑廠商ThermoFisher，Sigma-Aldrich（現被Merck收購），也有一批取得較大成就的創業型公司。包括瑞士的提供無支架三維細胞培養產品的InSphero公司，加拿大最大的生物科技公司STEMCELL Technologies提供專業的細胞培養基和細胞分選產品，和提供體內微環境模擬系統的美國公司Xcell Biosciences等。

主要的3D細胞培養技術

根據Meticulous Research Analysis的資料顯示：2016年，3D組織培養在全球細胞分析檢測市場占據了約9.3%的份額。2017年市場價值8.181億美元，在預計期內將以8.7%的年復合增長率增長，2022年達到12.426億美元。其中，美國在全球3D細胞市場貢獻了約34.8%的主要份額，位居全球首位。2016年，中國在全球3D細胞市場占5%的份額，遠不及美國，但預計未來五年中國將以11.8%的年復合增長率增長，成為年復合增長率最高的國家，具備市場發展潛力。

類器官行業的中下游公司營收點主要在于給各大新藥測試公司提供藥物體外試驗方案和疾病模型，即臨床試驗外包服務。例如哈佛大學Wyss生物工程學院2013年成立的生物技術公司Emulate，Emulate和FDA將合作，評估和鑒定使用Emulate的“器官芯片（Organs-on-Chips）”技術作為毒理學測試的平臺的可能性，并先后宣稱與阿斯利康和羅氏形成戰略合作；荷蘭生物技術公司 Mimetas研發了一種芯片腎，并與幾家制藥公司達成了應用合作協議將其用于藥物篩選；上市公司Organovo宣稱研發出第一臺生物器官的3D打印機，開發出人造肝﹑人造腎。并于2017年10月宣布與Viscient Biosciences達成合作，以進一步研究肝病。

類器官行業尚未在國內形成集中化產業集群。除了傳統的國外細胞培養試劑和原料代理商外，中下游的公司較為稀疏。在北京、上海和廣州區域先后涌出了幾家創業型公司。

類器官行業在歐洲國家發展較為迅速，這和歐洲類器官科研最早起步以及積累最多必不可分。類器官的領頭人Hans Clevers成立的Hubrecht Organoid Technology（HUB）是類器官最早的研發中心，HUB技術授權促進了Epistem、Cellesce、Crown Biosciences、STEMCELL Technologies在內的一批類器官公司的涌現。中國在類器官領域中，近年來其實也呈現出科研數量大幅度上升的趨勢，尤其在2019-2020年這兩年間顯現出了強勁的發展勢頭，發表的文獻數量在全球的排名從第六位（2009-2019年）躍至第二位（2020年），僅次于美國。參考歐洲的類器官發展模式，可以預計中國基礎科研積累的提升將加速類器官產業化的進程，在不遠的將來我們也將看到更多類器官公司的涌現。

-06-類器官的市場競爭

在全球范圍內類器官已經顯示出其強大的發展潛力，國外已經形成一定的市場競爭格局，多家公司正在快速的發展，例如AIVITA Biomedical、System1 Biosciences、JangoBio等。但國內還未真正形成競爭市場。

國內外部分類器官公司

數據來源：中君亞泰根據公開資料整理

-07-類器官的挑戰

類器官培養技術目前正處于技術爆發和科研成果井噴的階段，行業發展具有很大的前景，但也面臨較大的挑戰。比如如何利用好人體胚胎的干細胞建立持久穩定的體外模型；培養條件和環境刺激如何更真實的模擬還原人體微環境；科研屬性的產品如何實現量產，如何轉化為臨床產品等。

類器官作為新型的藥篩模型，成本雖然較PDX更低，但還是遠高于細胞系。類器官成本占比較高的包括培養使用的基質膠，常用的基質膠為美國BD Biosciences公司的Matrigel®，在行業內處于較為壟斷的地位，價格較高。Matrigel可以產生類似于哺乳動物細胞基底膜的生物活性基質材料，幫助多種類型的細胞達到附著和分化。Matrigel的來源是小鼠肉瘤細胞系，除了成本較高的問題，同時批次間存在一定的變異性。且由于是動物來源，對于有機類的藥物的檢測有局限性。考慮到小鼠來源的細胞外基質對于藥物篩選實驗結果存在一定的干擾，因此基質的工程技術開發用于合成外源差異較小的、非動物來源的基質膠用于成本下降和性能優化將是類器官產業化需要解決的關鍵性問題之一�；�質膠以外，培養也涉及多種細胞因子組合使用，細胞生長因子通常也價格不菲。選擇效果更好的細胞因子以及嘗試減少使用細胞因子的數量也可以帶來成本下降的空間。

目前大多類器官本身并不具備血管化的結構。因此，隨著類器官體積的增長，類器官受限于氧氣的缺失以及代謝廢物的增加，可能導致的組織壞死。已有研究構建血管內皮細胞微環境的腫瘤類器官，將類器官腫瘤細胞和血管內皮細胞在Matrigel上共同培養，生成血管結構以期解決類器官血管化缺失的問題。

血管化以外的難點還包括模擬腫瘤和免疫環境的相互作用關系。2019年Nature Protocol 期刊發表了腫瘤類器官和免疫細胞共同培養的相關protocol，可以體現和模擬出腫瘤微環境的部分特征。以上皮類器官和免疫細胞共培養模型為例，可通過在培養基中添加活化的免疫細胞、在組織消化成單細胞后和免疫細胞共同生長、添加ECM中的重組細胞因子等方法重塑類器官和免疫細胞的相互作用。

相比于單個類器官，類器官系統的構建能夠對藥物療效和潛在毒性做出更完整全面的評估。目前類器官僅能檢測出藥物對于腫瘤的抑制效果，對于其他器官組織是否存在其他副作用和安全性風險并不能做出預判。為了解決這一問題，2017年Skardal et al.構建了有心臟、肺部、肝臟組成的集成于閉合循環關注體中的類器官系統，以達到全面揭示藥物對不同器官的毒性和藥效的目的.

重復性和一致性 也是類器官發展的重大瓶頸，這很大程度上由于過程控制的欠缺與行業標準的空白。類器官培養過程中人為因素的過多參與、自動化程度低導致因為系統偶然性造成的誤差較大。同時，類器官檢測手段十分匱乏，活體觀察主要集中在形態學觀察，斷點觀察集中在基于熒光的各類指標的檢測，能夠活體實時對類器官各項指標進行檢測的光學、電化學等手段仍較為欠缺。當前，類器官很多研究者致力于制造更新的類器官，做出之前未能做出的類器官，我們可以制作海馬體、垂體、腺體、脾、腎的類器官，卻難以確定一個符合要求的類器官需要滿足那些個體的諸如尺寸、形狀、基因表達量等，群體的諸如類器官之間的方差等統計學指標。這將限制類器官的高效研究與向臨床研究的轉化。

對于類器官培養過程中的工程控制也是亟待解決的問題。當前類器官培養大多使用Matrigel水凝膠作為培養基質，Matrigel是康寧生命科學公司生產的Engelbreth-Holm-Swarm (EHS)小鼠肉瘤細胞分泌的膠狀蛋白混合物。Matrigel因其含有外源成分，難以應用在人的很多治療場景。另一方面，雖然類器官與微流控技術已有一些結合研究的例子，但使用微流控芯片對類器官生存的流體環境進行模擬仍不成熟，如何使用微流控等技術對類器官培養時流體微環境進行控制是亟待解決的問題。同時，現有類器官的直徑約在100-500μm之間，雖然具有一定程度的尺度效應，但還是難以模擬真實組織、器官的場景。倘若要制造尺度更大的類器官，類器官的血管化也是十分重要的問題。

-08-類器官的未來發展

1、國家政策推動

2021年1月28日，科技部下發的《關于對“十四五”國家重點研發計劃6個重點專項2021年度項目申報指南征求意見的通知》中，把“基于類器官的惡性腫瘤疾病模型”列為“十四五”國家重點研發計劃中首批啟動重點專項任務。另外，“十四五”國家重點研發計劃中重點指出，類器官作為一項重大的技術突破被用于疾病模型的建立中，且可用于研究病理狀態下干細胞變異、異質性及其發生機理，挖掘疾病診療的新靶標，探索診療新策略。類器官技術在未來將有非常大的應用價值和發展前景。

數據來源：科技部

2、類器官技術發展

傳統制備法，是一種依賴于生長因子的3D培養技術，有其局限性（比如對類器官及局部環境的控制不夠精確）。此外，傳統制備法不能很好地復制器官發展過程中復雜又動態的微環境，而這種微環境恰恰是器官形成的有利因素，這就使得獲取更完整的類似體內器官發展的類器官過程困難重重。

目前最前沿的便是，由器官芯片技術與類器組合成的“類器官芯片”技術。類器官不是唯一，多模型的整合才是王道，基于原位組織和動物模型的研究仍將是生物醫學研究的金標準。

類器官已經成為一種吸引人、易于從多能干細胞系復制的人體外組織模型，但是，以大腦類器官為例，其與原位細胞類型之間仍存在著很多差異，從而可能會混淆人們對內源性腦功能的認識，并可能提出關于神經病理學的誤導性假設，最終可能誤導治療方法。這就需要對原位組織中的每一種細胞特性進行深入的了解和表征，包括通過結合轉錄組、表觀基因組和蛋白質豐度等方法來表征的細胞類型；包括空間組織、形態和物理連接性參數的細胞結構組織；以及包括代謝狀態和電生理在內的細胞和組織功能指標。

在今天，類器官尚且無法獨當一面，而未來，類器官也不需獨當一面，多模型的整合才是研究的最佳方案。展望未來，類器官研究前景巨大。類器官高度仿真的疾病模型有望繼續在精準醫療、再生醫學等領域取得新的進展。同時，“ 類器官+”，有望給類器官研究帶來新的增長點。與活體實時成像技術結合的類器官技術有望讓人們第一次實時觀察到人早期發育過程；與生物3D打印相結合，有望實現基于類器官的功能性治療；與“人類細胞圖譜 (Human Cell Atlas, HCA)”技術結合，類器官細胞圖譜將推進病加速包括罕見遺傳病、復雜多因素疾病、精準腫瘤治療等以疾病為中心的研究。