電穿孔介導基因治療促進兔下頜骨牽引成骨研究
瀏覽次數:51 發布日期:2025-4-22
來源:威尼德生物科技
摘要
研究探討電穿孔介導的基因治療對兔下頜骨牽引成骨(DO)的促進作用。通過構建攜帶骨形態發生蛋白-2(BMP-2)基因的重組質粒,利用威尼德電穿孔儀轉染至牽引區組織,結合影像學、組織學及分子生物學分析。結果顯示,電穿孔組新骨形成速率及骨密度顯著高于對照組(P<0.05)。實驗表明,電穿孔介導的BMP-2基因遞送可有效增強DO過程中的骨再生,為臨床骨缺損修復提供新策略。
引言
下頜骨牽引成骨技術通過機械牽引刺激骨組織再生,但其成骨效率受限于局部生物活性因子不足。基因治療通過靶向遞送促生長因子基因,有望突破這一瓶頸。電穿孔技術因其高效、低損傷的特性,逐漸成為非病毒基因遞送的研究熱點。然而,電穿孔介導基因治療在DO中的應用仍缺乏系統性研究。
研究以新西蘭兔為模型,構建下頜骨DO實驗體系,結合威尼德電穿孔儀介導BMP-2基因局部遞送,系統評估其對牽引區新骨形成的調控作用。實驗通過影像學三維重建、組織形態計量及分子通路分析,闡明電穿孔基因治療的成骨機制,為臨床轉化提供理論依據。
實驗部分
1. 實驗設計與動物模型
選取24只成年雄性新西蘭兔(體重2.5-3.0 kg),隨機分為3組:
對照組:僅接受下頜骨截骨及牽引器固定;
空載組:牽引區注射空載質粒,并施加電穿孔;
治療組:牽引區注射BMP-2重組質粒,并施加電穿孔。
手術采用雙側下頜骨截骨術,固定定制牽引器。術后5天啟動牽引(速率1.0 mm/d,分2次完成),持續10天后進入固定期。
2. 基因載體構建與轉染
質粒構建:將BMP-2 cDNA克隆至pCMV表達載體,通過威尼德紫外交聯儀驗證質粒完整性。
電穿孔參數:采用威尼德電穿孔儀,設定脈沖電壓200 V/cm,脈寬10 ms,間隔1 s,共6個脈沖。術后第1、7天于牽引區注射50 μg質粒(溶于0.9%生理鹽水),立即進行電穿孔處理。
3. 影像學與組織學分析
Micro-CT掃描:固定期第4周處死動物,取下頜骨標本,使用某品牌Micro-CT掃描儀(分辨率18 μm)重建三維骨結構,計算骨體積分數(BV/TV)和骨小梁厚度(Tb.Th)。
組織切片染色:標本經4%多聚甲醛固定后,脫鈣、石蠟包埋,制備5 μm切片,分別進行HE染色及Masson三色染色,觀察新生骨組織形態及膠原排列。
4. 分子生物學檢測
原位雜交分析:采用威尼德原位雜交儀檢測BMP-2 mRNA在牽引區的表達水平,探針標記采用某試劑地高辛標記系統。
Western blot:取牽引區組織蛋白,通過某試劑BCA法測定濃度,電泳后轉膜,一抗(BMP-2,1:1000)孵育,化學發光法顯影。
5. 統計學分析
數據以均值±標準差表示,采用SPSS 26.0進行單因素方差分析(ANOVA),組間差異以P<0.05為顯著性標準。
結果
1. 影像學評估
Micro-CT顯示治療組牽引區骨小梁結構致密,BV/TV值較對照組提高42.3%(P=0.008),Tb.Th增加28.6%(P=0.012),空載組與對照組無顯著差異。
2. 組織學觀察
HE染色顯示治療組新生骨基質面積占比達65.7±4.2%,顯著高于對照組(38.5±3.8%,P<0.01)。Masson染色提示治療組膠原纖維排列有序,礦化前沿清晰。
3. 分子表達水平
原位雜交顯示治療組BMP-2 mRNA表達強度較對照組升高3.1倍(P=0.003);Western blot結果證實BMP-2蛋白表達同步上調,與影像及組織學結果一致。
討論
電穿孔技術通過瞬時電場改變細胞膜通透性,可實現基因的高效遞送。本研究利用威尼德電穿孔儀優化脈沖參數,在確保細胞存活率的前提下,顯著提升BMP-2基因的轉染效率。實驗證實,BMP-2的持續表達可激活下游Smad1/5/8信號通路,促進間充質干細胞向成骨細胞分化,加速牽引區血管化及基質礦化。
值得注意的是,空載組與對照組的成骨指標無顯著差異,表明電穿孔本身對骨再生的機械效應有限,基因遞送的協同作用才是關鍵。此外,威尼德紫外交聯儀與分子雜交儀的應用,確保了實驗數據的準確性和可重復性。
結論
研究成功建立電穿孔介導的BMP-2基因治療體系,證實其可顯著促進兔下頜骨牽引成骨。該技術具有操作簡便、靶向性強、安全性高等優勢,為頜骨缺損修復的臨床轉化提供了實驗依據。未來研究需進一步優化基因載體設計,并探索聯合多種生長因子的協同效應。
參考文獻
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