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Cas9-CKI小鼠繁育原則與路線講解

瀏覽次數:5219 發布日期:2020-4-16  來源:本站 僅供參考,謝絕轉載,否則責任自負

隨著基因工程技術的發展,針對特定基因研究的小鼠模型構建也越來越成熟。但是,構建成功的模型小鼠要用于實驗,還需要漫長的繁育之路要走。行百里者半九十,你以為模型構建成功了就結束了嗎?NO NO NO!繁育是提供合格實驗材料過程中的臨門一腳。

特別是對于CKO、CKI這些組織特異性的模型小鼠,需要與cre工具鼠配繁,才能得到在特定組織敲除或敲入的目的小鼠。而基于cas9[1]技術制作的CKI小鼠,對于不同的構建策略,繁育之路也是不同的。這一點需要涉及Cas9-CKI繁育工作的研究人員注意。否則,三周懷胎,一朝分娩,含辛茹苦到斷乳,最終還是寶寶心里苦。

Cas9-CKI小鼠的構建過程分體外和體內兩個階段:

 


 

1.F0 代繁育原則:

1) 利用CRISPR/Cas9系統打靶獲得到的小鼠,由于Cas9系統在受精卵階段對基因進行編輯,在F0代可能出現多種基因型并存的狀態。Cas9技術制作的小鼠不帶有Neo標記基因,但是會產生多條line,F0要分line繁育。

2) 陽性F0代小鼠和野生型背景鼠回交后,所得到的后代基因型將會單一。

3) F0代小鼠之間不能相互交配。

2. F1代及F1代之后繁育原則:

1) 由F0代小鼠和野生型背景鼠交配得到的后代小鼠稱為F1代。

2) 陽性F1代小鼠可用于保種建系。

Cas9-CKI小鼠的模型構建主要有2個策略,雖然繁育原理不同,但是其繁育路線大致相同;下面跟大家介紹一下兩個不同構建策略制作的Cas9-CKI小鼠的繁育路線。

 

構建策略I

使用loxp-stop-loxp系統[2]進行條件性表達靶基因時(如下圖),在未刪除loxp片段之前,小鼠表達野生型基因,在刪除loxp片段后,小鼠表達點突變后基因。


 

配繁原則是配cre工具鼠,刪除stop元件,構建KI小鼠或者組織特異性KI小鼠。

 

構建策略II

使用loxpmut-cre系統[3]進行條件性表達靶基因時(如下圖),

 


 

配繁原則是CKI小鼠配cre工具鼠,野生型的loxp之間的基因首先發生倒置,使得lox2272位點變為同向,同時發生片段刪除,表達預期的靶位點,所以通過配繁不同的cre工具小鼠,可以獲得不同組織表達的基因的定點突變。

 

繁育路線一

目標得到全身插入小鼠

1.F0(嵌合鼠)配背景鼠,得到F1代陽性鼠(F1代小鼠需測序);選擇需要的line繁育;

2.陽性F1代Fl/wt小鼠配全身性cre小鼠,得到KI/wt-creT小鼠(全身敲入目的基因且帶有cre基因);

3.KI/wt-creT小鼠配背景鼠,得到KI/wt-creW小鼠(全身敲入目的基因且不帶有cre基因);

4.KI/wt-creW小鼠互配得到KI/KI-creW小鼠。(全身敲入目的基因純合小鼠)

 

繁育路線二

目標得到組織特異性插入小鼠

1.F0(嵌合鼠)配背景鼠,得到F1代陽性鼠(F1代小鼠需測序);選擇需要的line繁育;

2.陽性F1代Fl/wt小鼠配組織特異性cre小鼠,得到fI/wt-creT小鼠(組織特異性敲入目的基因且帶有cre基因);

3.fI/wt-creT小鼠配fI/wt-creW或fI/wt小鼠,得到fI/fl-creT小鼠。(組織特異性敲入目的基因純合小鼠)

 

繁育路線三

目標得到flox小鼠

1.F0(嵌合鼠)配背景鼠,得到F1代陽性鼠(F1代小鼠需測序);選擇需要的line繁育;

2.陽性F1代Fl/wt小鼠互配,得到fI/fl小鼠。(組織特異性敲入flox純合小鼠)

 

Cas9-CKI小鼠繁育還是比較專業的,但是理清了思路就明白其中奧秘了。對于需要配cre工具鼠的CKI小鼠來說,如果想要得到純合插入的小鼠,使用的cre應避免與目的基因在同一染色體上,否則得不到純合插入小鼠。萬里陽光道,不負上心人,在小鼠繁育的道路上,你多上點心知道的多一點,就更能把握正確的方向。

漫漫科研路,莘莘同行人,加油~

 

參考文獻

[1] Shalem O , Sanjana N E , Hartenian E , et al. Genome-Scale CRISPR-Cas9 Knockout Screening in Human Cells[J]. Science, 2014, 343(6166):84-87.

[2] Sblattero D , Lou J , Marzari R , et al. In vivo recombination as a tool to generate molecular diversity in phage antibody libraries[J]. journal of biotechnology, 2001, 74(4):303-315.

[3] Yu G , Xin-Tai Z . A New Combination of Mutated loxPs in a Vector for Construction of Phage Antibody Libraries[J]. Acta Biochimica Et Biophysica Sinica(7):7.


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