ELISA試驗成功嚴(yán)格把控事項匯集
ELISA，即酶聯(lián)免疫吸附試驗，是一種常用的生物化學(xué)實驗方法，用于檢測生物樣本中特定的抗原或抗體。在試驗過程中，我們面臨著諸多挑戰(zhàn)。從試劑的選擇到操作的精細(xì)度，每一個細(xì)節(jié)都可能影響到最終的結(jié)果。試驗每一次失敗都讓我們更加深入地理解試驗的復(fù)雜性，也為我們積累了豐富的經(jīng)驗。現(xiàn)將ELISA試驗成功嚴(yán)格把控事項匯集如下：
1、嚴(yán)格按照試劑說明書進(jìn)行操作。
2、檢測前應(yīng)將試劑放置室溫平衡半小時，洗滌液應(yīng)現(xiàn)用現(xiàn)配，同時觀察濃縮洗滌液中有無結(jié)晶，若有結(jié)晶應(yīng)放37℃水浴中融化后方可使用。加入底物TMB時應(yīng)注意有無顏色變化，若已顯色則可能過期或變質(zhì)，也不可使用。
3、加樣后及時放入孵育箱。標(biāo)本較多時，要分批操作。按照說明書步驟嚴(yán)格控制操作時間，防止孵育時間人為延長，導(dǎo)致非特異性結(jié)合緊附于反應(yīng)孔周圍，難以清洗*。
4、封板溫育時，各孔一定要封嚴(yán)，防止陽性標(biāo)本的液體蒸發(fā)，不會引起孔間的污染，產(chǎn)生周邊現(xiàn)象從而導(dǎo)致“花板“的出現(xiàn)。
5、應(yīng)保證酶標(biāo)版清潔，整個操作過程中保證酶標(biāo)版不接觸次氯酸。
6、加酶試劑后用吸水紙在酶標(biāo)版表面輕拭吸干。
7、合理安排檢測量，以免反應(yīng)板過多造成洗板等待時間長。
8、手動洗板時，加洗液要快速，沒有多道移液器可以使用洗瓶。洗液應(yīng)新鮮配制，以免被其他試劑污染，或染菌。加好洗液后浸泡 30s-1min。甩板倒液要迅速干脆。倒液后在吸水紙上拍板，選用無粉塵和碎屑的吸水紙。需要用力拍板，使孔內(nèi)沒有可見液體掛壁；但也不能太重，不能讓樣品干太久。酶標(biāo)板拍干后立即做后續(xù)的加液。
9、用洗板機(jī)洗板時，保證洗液注滿各孔，洗板針暢通，洗完版后在吸水紙（選擇干凈，無塵的吸水材料）上輕輕拍干。若血清中的纖維蛋白或洗滌液中有結(jié)晶，將堵塞洗板機(jī)針孔，造成全堵或半堵狀態(tài)，以致使未結(jié)合的酶標(biāo)記物不能*洗脫，而使最后底物顯色時加深，造成假陽性或花板。廢液瓶裝滿后應(yīng)及時清空，以防止廢液回流對管道的污染，而使洗滌不*，造成花板。洗板結(jié)束后應(yīng)用蒸餾水*清洗管道，以防止廢液在管道中的殘留。洗滌次數(shù)及加液量不可*按照試劑說明書設(shè)定，應(yīng)根據(jù)本實驗室的實際情況來設(shè)定，開展新項目前，應(yīng)做好驗證工作，根據(jù)洗滌的效果來決定洗滌的次數(shù)和加液量。同時應(yīng)根據(jù)儀器維護(hù)保養(yǎng)程序，定期對洗板機(jī)進(jìn)行維護(hù)保養(yǎng)。
10、加樣量的準(zhǔn)確與否，直接影響抗原抗體結(jié)合物的濃度，直至最后顯色的深淺。吸嘴插入血清不可太深，若插入太深，吸嘴外壁可能粘連太多血清，輕微的抖動動即可將吸咀外壁的血清濺入其它包被孔中，造成交叉污染。加樣時應(yīng)盡可能的垂直加樣，并加在包被孔的底部，不可加在孔的上部。標(biāo)本量大時，可考慮使用排槍加試劑，可提高速度，但使用排槍時應(yīng)注意吸嘴一定要裝好，不可松動，否則會影響加樣量的準(zhǔn)確度。加樣時保持顯色劑不外流，顯色劑應(yīng)避免接觸金屬器械。加終止液時應(yīng)避免產(chǎn)生氣泡。
11、加樣時間間隔對結(jié)果也有一定的影響，在競爭抑制法試驗中，理論上應(yīng)該是標(biāo)本與酶標(biāo)抗體混合后同時加入反應(yīng)孔，若標(biāo)本先于酶標(biāo)抗體加入反應(yīng)孔，則標(biāo)本會先與包被抗體進(jìn)行反應(yīng)，造成特異性假陽性。若是有干擾物質(zhì)存在時表現(xiàn)明顯，在公平條件下，干擾物質(zhì)與包被抗體的結(jié)合能力會低于標(biāo)本，而在非公平條件下，干擾物質(zhì)會優(yōu)先與包被抗體進(jìn)行結(jié)合，出現(xiàn)假陽性。做HBcAb項目時，若標(biāo)本與酶加樣時間間隔太長，會引起吸光度的趨勢性變化，會造成吸光度的降低。特別是針對臨界值標(biāo)本，出現(xiàn)假陽性。
12、洗滌液多為含非離子型洗滌劑的中性緩沖液，各種試劑盒的洗液不要混用。洗液需要稀釋時，應(yīng)按要求稀釋。配制洗液應(yīng)用新鮮的和高質(zhì)量的超純水或雙蒸水，電導(dǎo)率小于1.5μS/cm,洗液如果結(jié)晶應(yīng)待其溶解后配制。配制后要測定其pH值，使其范圍在7.2-7.4之間。
1、嚴(yán)格按照試劑說明書進(jìn)行操作。
2、檢測前應(yīng)將試劑放置室溫平衡半小時，洗滌液應(yīng)現(xiàn)用現(xiàn)配，同時觀察濃縮洗滌液中有無結(jié)晶，若有結(jié)晶應(yīng)放37℃水浴中融化后方可使用。加入底物TMB時應(yīng)注意有無顏色變化，若已顯色則可能過期或變質(zhì)，也不可使用。
3、加樣后及時放入孵育箱。標(biāo)本較多時，要分批操作。按照說明書步驟嚴(yán)格控制操作時間，防止孵育時間人為延長，導(dǎo)致非特異性結(jié)合緊附于反應(yīng)孔周圍，難以清洗*。
4、封板溫育時，各孔一定要封嚴(yán)，防止陽性標(biāo)本的液體蒸發(fā)，不會引起孔間的污染，產(chǎn)生周邊現(xiàn)象從而導(dǎo)致“花板“的出現(xiàn)。
5、應(yīng)保證酶標(biāo)版清潔，整個操作過程中保證酶標(biāo)版不接觸次氯酸。
6、加酶試劑后用吸水紙在酶標(biāo)版表面輕拭吸干。
7、合理安排檢測量，以免反應(yīng)板過多造成洗板等待時間長。
8、手動洗板時，加洗液要快速，沒有多道移液器可以使用洗瓶。洗液應(yīng)新鮮配制，以免被其他試劑污染，或染菌。加好洗液后浸泡 30s-1min。甩板倒液要迅速干脆。倒液后在吸水紙上拍板，選用無粉塵和碎屑的吸水紙。需要用力拍板，使孔內(nèi)沒有可見液體掛壁；但也不能太重，不能讓樣品干太久。酶標(biāo)板拍干后立即做后續(xù)的加液。
9、用洗板機(jī)洗板時，保證洗液注滿各孔，洗板針暢通，洗完版后在吸水紙（選擇干凈，無塵的吸水材料）上輕輕拍干。若血清中的纖維蛋白或洗滌液中有結(jié)晶，將堵塞洗板機(jī)針孔，造成全堵或半堵狀態(tài)，以致使未結(jié)合的酶標(biāo)記物不能*洗脫，而使最后底物顯色時加深，造成假陽性或花板。廢液瓶裝滿后應(yīng)及時清空，以防止廢液回流對管道的污染，而使洗滌不*，造成花板。洗板結(jié)束后應(yīng)用蒸餾水*清洗管道，以防止廢液在管道中的殘留。洗滌次數(shù)及加液量不可*按照試劑說明書設(shè)定，應(yīng)根據(jù)本實驗室的實際情況來設(shè)定，開展新項目前，應(yīng)做好驗證工作，根據(jù)洗滌的效果來決定洗滌的次數(shù)和加液量。同時應(yīng)根據(jù)儀器維護(hù)保養(yǎng)程序，定期對洗板機(jī)進(jìn)行維護(hù)保養(yǎng)。
10、加樣量的準(zhǔn)確與否，直接影響抗原抗體結(jié)合物的濃度，直至最后顯色的深淺。吸嘴插入血清不可太深，若插入太深，吸嘴外壁可能粘連太多血清，輕微的抖動動即可將吸咀外壁的血清濺入其它包被孔中，造成交叉污染。加樣時應(yīng)盡可能的垂直加樣，并加在包被孔的底部，不可加在孔的上部。標(biāo)本量大時，可考慮使用排槍加試劑，可提高速度，但使用排槍時應(yīng)注意吸嘴一定要裝好，不可松動，否則會影響加樣量的準(zhǔn)確度。加樣時保持顯色劑不外流，顯色劑應(yīng)避免接觸金屬器械。加終止液時應(yīng)避免產(chǎn)生氣泡。
11、加樣時間間隔對結(jié)果也有一定的影響，在競爭抑制法試驗中，理論上應(yīng)該是標(biāo)本與酶標(biāo)抗體混合后同時加入反應(yīng)孔，若標(biāo)本先于酶標(biāo)抗體加入反應(yīng)孔，則標(biāo)本會先與包被抗體進(jìn)行反應(yīng)，造成特異性假陽性。若是有干擾物質(zhì)存在時表現(xiàn)明顯，在公平條件下，干擾物質(zhì)與包被抗體的結(jié)合能力會低于標(biāo)本，而在非公平條件下，干擾物質(zhì)會優(yōu)先與包被抗體進(jìn)行結(jié)合，出現(xiàn)假陽性。做HBcAb項目時，若標(biāo)本與酶加樣時間間隔太長，會引起吸光度的趨勢性變化，會造成吸光度的降低。特別是針對臨界值標(biāo)本，出現(xiàn)假陽性。
12、洗滌液多為含非離子型洗滌劑的中性緩沖液，各種試劑盒的洗液不要混用。洗液需要稀釋時，應(yīng)按要求稀釋。配制洗液應(yīng)用新鮮的和高質(zhì)量的超純水或雙蒸水，電導(dǎo)率小于1.5μS/cm,洗液如果結(jié)晶應(yīng)待其溶解后配制。配制后要測定其pH值，使其范圍在7.2-7.4之間。
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